Версия для слабовидящих: Вкл Изображения: Вкл Размер шрифта: A A A Цветовая схема: A A A A

Лаборатория биоэлектрохимии

Направления исследований

Разработка нанофлюидных устройств для детектирования одиночных молекул и определения их свойств 

Молекулярное зондирование с помощью нанопор является одним из основных инструментов протеомики. Однако его применение ограничено водорастворимыми молекулами и комплексами и часто реализуется в условиях, сильно отличающихся от естественной среды изучаемых объектов. Используя методы патч-клампа и электрофизиологических измерений, мы исследуем, как биомиметические мембранные нанотрубки, сформированные из синтетических липидов (липидного бислоя), могут быть использованы в качестве эластичных нанопор с контролируемым радиусом просвета и управляемым переносом молекул аналита. Упругие свойства липидной мембраны обеспечивают обратимую деформируемость стенки нанопоры под воздействием внешних сил, а жидкокристаллическое состояние липидного бислоя – электромиграцию белков, связывающихся с внутренней поверхностью нанопоры. Мы изучаем, насколько шумовые характеристики ионного тока, текущего через такие нанопоры, позволяют использовать их для детектирования и распознавания одиночных белковых молекул, а также разрабатываем методы эффективной доставки исследуемых белков внутрь нанопоры. 

Параллельно с этим мы проводим теоретические и экспериментальные исследования упругого взаимодействия эластичной нанопоры с одиночными белками: выясняем, как геометрическая форма, размер и жесткость белка будут влиять на локальную деформацию мембранной стенки нанопоры и, следовательно, на ее ионную проводимость, для решения обратной задачи – определение вышеуказанных параметров белка по оставляемому им характерному деформационному “отпечатку”. 

Для привлечения белков на внешнюю поверхность нанопоры нами используются специально разработанные фолдамерные бола-амфифилы (ФБА), которые трансмембранно располагаются в липидном бислое и могут служить с внешней стороны лигандом, связывающимся с белком, а с внутренней – точкой приложения силы электрическим полем, что позволяет протаскивать белок через пору. 

Помимо фундаментальных работ, мы решаем прикладные задачи создания детекторов вирусных и вирусоподобных частиц на основе твердотельных нанопор и их имплементации в микрофлюидные чипы.

  • Наномеханика липидного бислоя в процессах его топологической перестройки (деление и слияние биологических мембран) в норме и при патологии

    За деление/слияние клеточных мембран отвечают специализированные белки, чья функциональная активность сводится к созданию сильно искривленных мембранных структур, в которых, по неизвестной пока причине, происходит дестабилизация липидного бислоя и последующая его реорганизация – объединение двух бислоев в один или разделение одного на два. При этом крайне важно сохранение барьерных свойств липидного бислоя. Предполагается, что именно формирование проводящих дефектов в мембранах при их большой изгибной деформации, в том числе во время слияния и деления, может быть причиной возникновения или развития клеточных патологий, которые в конечном итоге приводят к различным заболеваниям. Нормализация процессов топологической перестройки мембран может являться одним из способов борьбы с такими заболеваниями. И, наоборот, противодействие нормальной работе вирусных белков слияния – путь к предотвращению инфицирования клетки оболочечными вирусами (вирусы гепатитов В и С, вирусы гриппа, коронавирусы). 

  • Наше понимание принципов работы и эволюционного развития белков, специализирующихся на перестройке мембран, равно как и причин патологий, ассоциированных с нарушением работы этих белков или нарушением липидного гомеостаза, невозможно без количественного знания о пределе устойчивости/прочности липидного бислоя при изгибе, о характере его упругости при экстремальных значениях его геометрической кривизны, без представлений о молекулярных механизмах, ведущих к потере им структурной стабильности, и роли липидного состава в этом процессе. Для оценки изгибной прочности липидного бислоя мы разрабатываем тест-систему, основанную на электрофизиологических измерениях, выявляем физические факторы, которые индуцируют потерю его структурной устойчивости при изгибе, и молекулярные пути его последующей топологической реорганизации и стараемся определить роль липидного состава и ионного окружения в данном процессе. В качестве модели мембраны с сильной изгибной деформацией нами используются мембранные нанотрубки, вытягиваемые из липидных бислоев методами пэтч-клампа.  

  • Помимо экспериментальных методов исследования механики мембраны при ее экстремальных деформациях, нами используются теоретические модели, разрабатываемые в рамках теории упругости сплошных сред и термодинамики мембран, а также подходы молекулярной динамики.

  • Роль амфипатических липидов в морфогенезе биологических мембран

    Изменение формы клеточной мембраны играет важную роль в различных биологических процессах, таких как деление клеток и органелл, передача сигнала, а также внутри- и межклеточный транспорт. Одним из способов изменения формы мембран является образование трубок, цилиндрических структур, выступающих из поверхности мембраны. Такие трубки вместе с так называемыми цистернами (уплощенными мешочками) формируют сложную транспортную сеть в эндоплазматическом ретикулуме, в которой происходит синтез, фолдинг и транспорт белков и липидов, что обеспечивает коммуникацию между его различными частями. Также тубуляция мембран может наблюдаться и при эндоцитозе, где она играет жизненно важную роль в поглощении внеклеточных частиц и рециркуляции мембранных компонентов. 

  • На сегодня установлено достаточно много механизмов, которые клетка использует для изменения формы мембраны, в частности, для образования мембранных трубок. Одним из них является взаимодействие мембраны со специализированными периферийными белками, чья функция заключается в распознавании и генерации изгибных деформаций липидного бислоя – жидкокристаллического матрикса любой клеточной мембраны. Этот процесс ассоциировали со связыванием амфифильных спиралей (AC) – белковых или пептидных сегментов, у которых гидрофобные и гидрофильные аминокислоты расположены на противоположной поверхности спирали. Используя методы электрофизиологии (измерение ионной проводимости мембранных структур), атомно-силовой микроскопии и флуоресцентной микроскопии (конфокальная микроскопия, TIRF), мы исследуем, как амфифильные пептиды различных периферийных белков и белков вирусного слияния изменяют механические и геометрических параметры липидного бислоя, а также пытаемся определить, какова роль этих изменений в создании сильно искривленных мембранных структур в норме и патологии.

  • Разработка экспериментальной платформы для поиска антибиотиков нового поколения к лекарственно-устойчивому золотистому стафилококку

    В рамках данного проекта создается суперпродуцент РНК полимеразы S. aureus на базе E. coli. Получение большого количества РНК полимеразы S. aureus необходимо для кристаллизации этого белка и решения его трёхмерной структуры с помощью рентгеноструктурного анализа. Данная система позволит получать комплексы РНК полимеразы S. aureus с низкомолекулярными соединениями, обладающими антимикробной активностью. Решение трёхмерных структур таких комплексов позволит осуществлять направленную разработку высокоспецифичных антибиотиков нового поколения, активных в отношении золотистого стафилококка и родственных бактериальных патогенов.

  • Исследование механизмов транскрипционного мутагенеза у эукариот

    Мутации, связанные с включением РНК полимеразой неправильных нуклеозидов, с некоторой частотой встречаются во всех клеточных РНК. Частота таких ошибок считается невысокой для общего пула РНК, однако для некоторых клеточных РНК доля молекул с мутациями может быть значительной. Известно, что точность транскрипции варьирует в зависимости от последовательности транскрибируемой ДНК и физиологического состояния клетки. Повышенная частота транскрипционных мутаций наблюдается при старении и, по крайней мере, при некоторых видах рака. Повышенная частота транскрипционного мутагенеза ведет к развитию протеотоксического стресса в клетке и снижению её жизнеспособности. Молекулярный механизм мутагенеза при транскрипции последовательностей ДНК, где его частота наиболее высока, в настоящее время неизвестен. Использование методов криоэлектронной микроскопии и рентгеноструктурного анализа позволит определить структурную основу транскрипционного мутагенеза. Это, в свою очередь, даст возможность изучить роль транскрипционного мутагенеза в клетках животных путём регуляции его интенсивности. 

  • Создание сенсорных клеточных тест-систем in vitro

    Актуальность направления по созданию сенсорных клеточных систем связана с поиском новых моделей скрининга различных химических соединений – потенциальных лекарственных средств против коронавирусов SARS-CoV-1 и SARS-CoV-2, вызывающих тяжелые респираторные инфекции. Свойство гипервариабельности RBD-домена S-белка коронавируса позволяет вирусу уходить от иммунного ответа, вызываемого старыми вариантами вакцин, что делает актуальным поиск новых мишеней для воздействия на вирус. Такой мишенью может стать 3CL-протеаза вируса, поскольку, с одной стороны, работа данного фермента критически важна для жизненного цикла вируса, а с другой – данный белок весьма консервативен для всего семейства коронавирусов. 

  • Разрабатываемые нами сенсорные клеточные системы, основанные на технологии химерных флуоресцентных белковых меток, будут способны количественно распознавать корректную работу 3CL-протеазы коронавируса SARS-CoV-2. Это позволит нам применять данную модель для решения нескольких научных задач, например, для скрининга низкомолекулярных веществ-ингибиторов или создания эукариотического дисплея поиска однодоменных антител, ингибирующих действие протеазы.

  • Разработка методов молекулярно-генетической диагностики и контроля саногенеза здоровых людей

  • Гомеостаз представляет собой сложный динамический процесс, который происходит на всех структурных и функциональных уровнях организма, в различных органах и тканях, обеспечивающий жизнедеятельность организма и выполнение многочисленных функций, необходимых для нормальных биологических и продуктивных взаимоотношений с окружающей средой. Организм постоянно подвергается патогенным воздействиям, вызывающим патологические изменения в тканях, различные по степени и форме. Однако эти изменения устраняются защитными саногенетическими механизмами, предотвращающими трансформацию локальной патологии в болезнь. Патологический процесс трансформируется в болезнь только тогда, когда механизмы саногенеза становятся нарушенными или недостаточными и организм не может функционировать в необходимой и оптимальной степени. 

    В качестве меры уровня саногенеза здорового человека возможно использование физиологической устойчивости организма, измеряемого как скорость восстановления после возмущающего патогенного воздействия [Gijzel SMW et al. J Am Geriatr Soc. 2019; Whitson HE et al. J Gerontol Series A: Biomed Sci Med Sci. 2015]. Установлена связь физиологической устойчивости и смертности [Olde Rikkert Marcel GM et al. Crit Care Med. 2016]. Таким образом, изменения ее показателей могут служить ранним предупреждающим признаком надвигающихся последствий для здоровья. Следовательно, для рационального проектирования, разработки и проверки эффективных мер здоровьесбережения необходимо лучшее количественное понимание сложной взаимосвязи между медленной динамикой физиологического состояния, устойчивостью и экспоненциальным ускорением заболеваемости с возрастом и смертностью. Для этого требуется разработка методов оценки физиологической устойчивости организма здорового человека.

  • Данная задача решается нами в рамках государственного задания «Разработка методов молекулярно-генетической диагностики и контроля саногенеза здоровых людей». Нами начато лонгитюдное исследование – наблюдения за изменениями специально отобранного набора молекулярно-генетических маркеров и физиологических показателей здоровья и частотой заболеваемости среди жителей Российской Федерации. Для этого мы используем метод оценки физиологической устойчивости, основанный на ранее разработанной статистической модели [Pyrkov TV et al, Nat Comm. 2021]. 

  • На основе большой базы данных результатов общего анализа крови с использованием методов машинного обучения нам удалось выделить динамический индикатор состояния организма (ДИСО), показатель которого коррелирует с возрастом и количеством хронических заболеваний человека. Мы используем аналогичный подход, применяя его к базе данных общего клинического анализа крови человека, полученных в период с 2016 года по настоящее время в различных географических областях РФ. Проводится исследование корреляции ДИСО с развитием эпидемии, вызванной COVID-19, а также ее влияния на здоровье населения Российской Федерации. 

  • Экспериментальные подходы

    • высокопроизводительные электрофизиологические методы:

      - патч-кламп
      - адмиттанс-спектроскопия
      - компенсация внутримембранного поля
    • атомно-силовая микроскопия
    • конфокальная микроскопия/скрининг
    • микроскопия полного внутреннего отражения
    • поверхностный плазмонный резонанс
    • выделение и кристаллизация белков

    Объекты исследования

    1. модельные липидные мембраны:

      - бислойные липидные мембраны
      - гигантские однослойные везикулы
    2. клетки
    3. липидные нанотрубки
    4. твердотельные нанопоры

    Наши публикации


    Публикации лаборатории в 2022-2023 гг.

    Aftahy K, Arrasate P, Bashkirov PV, Kuzmin PI, Maurizot V, Huc I*, Frolov VA* Molecular sensing and manipulation of protein oligomerization in membrane nanotubes with bolaamphiphilic foldamersJ Am Chem Soc 2023, 145, 46, 25150–25159, doi: 10.1021/jacs.3c05753.

    Jovanović O, Chekashkina K, Škulj S, Žuna K, Vazdar M, Bashkirov PV, Pohl EE. Membrane lipid reshaping underlies oxidative stress sensing by the mitochondrial proteins UCP1 and ANT1. Antioxidants 2022, 11 (12), 2314; doi: 10.3390/antiox11122314

    Ivanova, K.A., Bashkirov, P.V. Noise in ultrashort elastic membrane nanotube. Biochem. Moscow Suppl. Ser. A 2022, 16, 320–327. doi:10.1134/S1990747822050063

    Наш опыт

    Bashkirov PV, Kuzmin PI, Lillo JV, Frolov VA. Molecular shape solution for mesoscopic remodeling of cellular membranes. Annu Rev Biophys. 2022, 51: 473-497. doi: 10.1146/annurev-biophys-011422-100054.

    Ivchenkov DV, Kuzmin PI, Galimzyanov TR, Shnyrova AV, Bashkirov PV, Frolov VA. Nonlinear material and ionic transport through membrane nanotubes. Biochim Biophys Acta Biomembr. 2021, 1863(10), 183677. doi: 10.1016/j.bbamem.2021.183677.

    Bashkirov PV, Kuzmin PI, Chekashkina K, Arrasate P, Lillo JV, Shnyrova AV, Frolov VA. Reconstitution and real-time quantification of membrane remodeling by single proteins and protein complexes. Nat Protoc. 2020, 15(8), 2443-2469. doi: 10.1038/s41596-020-0337-1.

    Bashkirov PV, Chekashkina KV, Shnyrova AV, Frolov VA. Electrophysiological methods for detection of membrane leakage and hemifission by dynamin 1. In: Ramachandran R. (eds) Dynamin Superfamily GTPases. Methods Mol Biol. 2020, 2159:141-162. doi: 10.1007/978-1-0716-0676-6_11.

    Galimzyanov TR, Bashkirov PV, Blank PS, Zimmerberg J, Batishchev OV, Akimov SA. Monolayerwise application of linear elasticity theory well describes strongly deformed lipid membranes and the effect of solvent. Soft Matter 2020, 16(5), 1179-1189. doi: 10.1039/C9SM02079A.

    Espadas J, Pendin D, Bocanegra R, Escalada A, Misticoni G, Trevisan T, Velasco-Olmo A, Montagna A, Bova S, Ibarra B, Kuzmin PI, Bashkirov PV, Shnyrova AV, Frolov VA, Daga A. Dynamic constriction and fission of endoplasmic reticulum membranes by reticulon. Nat Commun. 2019, 10(1): 5327. doi: 10.1038/s41467-019-13327-7

    Bassereau P, Jin R, Baumgart T, Deserno M, Dimova R, Frolov VA, Bashkirov PV, Grubmüller H, Jahn R, Risselada HJ, Johannes L, Kozlov MM, Lipowsky R, Pucadyil TJ, Zeno WF, Stachowiak JC, Stamou D, Breuer A, Lauritsen L, Simon C, Sykes C, Voth GA, Weikl TR. The 2018 biomembrane curvature and remodeling roadmap. J Phys D Appl Phys. 2018, 51(34), 343001. doi: 10.1088/1361-6463/aacb98.

    Efimova SS, Zakharova AA, Ismagilov AA, Schagina LV, Malev VV, Bashkirov PV, and Ostroumova OS. Lipid-mediated regulation of pore-forming activity of syringomycin E by thyroid hormones and xanthene dyes. Biochim Biophys Acta Biomembr. 2018, 1860(3), 691-699. doi:10.1016/j.bbamem.2017.12.010.

    Shnyrova AV, Bashkirov PV, Akimov SA, Pucadyil TJ, Zimmerberg J, Schmid SL, Frolov VA. Geometric catalysis of membrane fission driven by flexible dynamin rings. Science 2013, 339(6126), 1433-1436. doi: 10.1126/science.1233920.

    Bashkirov PV, Akimov SA, Evseev AI, Schmid SL, Zimmerberg J, Frolov VA. GTPase cycle of dynamin is coupled to membrane squeeze and release, leading to spontaneous fission. Cell 2008, 135(7), 1276-1286. doi: 10.1016/j.cell.2008.11.028.




    Сотрудники лаборатории Все сотрудники
    >